Роль и методы бактериологических исследований при диагностике заболеваний органов желудочно-кишечного тракта

Бактериологические исследования

Бактерии и грибы содержатся в большом количестве в кишечнике и выполняют ряд важнейших функций: витаминообразующую, защитную (за счет конкурирования с условно-патогенной и патогенной флорой), переваривающую (благодаря содержанию в них различных ферментов). Активизация в кишечнике какой-либо одной группы (гнилостной, бродильной или патогенной) приводит к изменению нормального соотношения микрофлоры – дисбактериозу. Дисбактериоз осложняет течение большинства заболеваний ЖКТ .

Лекарственный дисбактериоз (грибковый, стафилококковый, синегнойный, протейный), развивающийся при лечении антибактериальными препаратами, нередко протекает тяжело, при несвоевременной диагностике часто ведет к сепсису, шоку, иногда с летальным исходом.

Диагноз дисбактериоза ставится на основании бактериологического исследования кала, т. е. методом посева кала на питательные среды с дальнейшей идентификацией микроорганизмов.

Выявление микробной контаминации кишечника. Микробная контаминация кишечника характеризуется избыточным ростом условно-патогенных микроорганизмов (эшерихий, клебсиелл, энтерококков, лактобактерий) и подавлением роста бифидобактерий и других микроорганизмов, относящихся к защитным факторам.

Основные причины избыточного роста условно-патогенных микроорганизмов

перенесенный в недавнем прошлом острый гастроэнтерит или энтероколит;
заболевания, сопровождающиеся нарушением переваривания и всасывания пищевых продуктов в тонком кишечнике (врожденный или приобретенный дефицит лактазы, сахаразы и других ферментов гидролиза дисахаридов, целиакия (глютеновая недостаточность), ахлоргидрия, ахилия, секреторная недостаточность поджелудочной железы, недостаточность желчевыделения);
заболевания, сопровождающиеся нарушением моторной функции тонкого кишечника (дивертикулы, стриктуры кишечника при болезни Крона, радиационном поражении, после хирургических операций на органах брюшной полости; обструкции при опухолях тонкой кишки; дискинезии кишечника, например при заболеваниях желчевыводящих путей);
хронические заболевания внутренних органов, сопровождающиеся признаками иммунодефицита (ВИЧ-инфекция, сахарный диабет, инфекционные заболевания, склеродермия и др.);
массивная длительная терапия антибиотиками широкого спектра действия.

В результате микробной контаминации кишечника происходят структурные изменения его слизистой оболочки (уплощение ворсинок, воспалительная инфильтрация собственной пластинки), что приводит к стойкому нарушению всасывания воды и пищевых продуктов, развитию длительной, рефрактерной к лечению, диареи и других диспептических расстройств и появлению признаков мальабсорбции.

Бактериологические исследования для выявления избыточного бактериального роста в кишечнике

Выявление избыточного бактериального роста в кишечнике возможно несколькими способами, 2 из которых наиболее информативны:

бактериологическое исследование аспиратов тощей кишки;
водородный дыхательный тест.

Бактериологическое исследование аспиратов тощей кишки

При микробной контаминации позволяет выявить значительное увеличение общего числа микроорганизмов в 1 мл кишечного сока (более 100/мл), а также преобладание условно-патогенной микрофлоры. Для проведения исследования используют длинный двухметровый полиэтиленовый зонд, вводимый через эндоскоп с биопсийным каналом на глубину около 35 см далее привратника.

Водородный дыхательный тест

Относится к группе многочисленных непрямых методов определения бактериальной колонизации тонкого кишечника. Он основан на способности большинства бактерий к ферментативному расщеплению углеводов, в ходе которого образуется водород, который после всасывания в кровь выводится из организма при дыхании.

Исследование проводится утром натощак. Вначале получают исходный образец выдыхаемого воздуха, для этого пациент делает глубокий вдох и максимальный выдох в модифицированную трубку Холдейна–Пристли. В конце выдоха 30 мл воздуха забирают в пластиковый шприц. Затем больной принимает внутрь 50 г лактулозы (или глюкозы). В течение 3 ч каждые 20 мин описанным способом собирают образцы выдыхаемого воздуха (по 30 мл). Все полученные образцы анализируют на водородном анализаторе.

В норме количество водорода в выдыхаемом воздухе возрастает умеренно, причем пик концентрации водорода наступает через 2 ч и более от начала исследования. При избыточном бактериальном росте в тонкой кишке пик концентрации Н 2 (более 20 р/мин) достигается обычно в пределах первого часа. Водородный дыхательный тест достаточно прост и безопасен, хотя его чувствительность ниже, чем бактериологического исследования аспирата тощей кишки.

Микрогельминтологические методы используют для обнаружения яиц или личинок гельминтов. Для исследования готовят нативные мазки или фиксированные окрашенные препараты.

При исследовании на энтеробиоз применяют методы соскоба с перианальных складок деревянным шпателем или ватным тампоном. Из соскобов приготовляют препараты, которые рассматривают под микроскопом.

Для контроля лечения в лабораторию направляют всю порцию испражнений в дни приема противоглистного средства.

Рентгенологические методы исследования

Рентгенологический метод исследования кишечника дает представление о расположении различных отделов кишечника, их форме, состоянии моторно-эвакуаторной функции (тонус и перистальтика), позволяет выявить воспалительные явления в слизистой оболочке кишечника, диагностировать расширения или сужения, определить изменения рельефа слизистой оболочки и оценить двигательную активность кишечника.

Основные методы:

обзорная рентгенограмма брюшной полости;
искусственное контрастирование;
чреззондовое ретроградное контрастирование тонкой кишки;
ирригоскопия;
двойное контрастирование толстой кишки.

Обзорная рентгенограмма брюшной полости в вертикальном положении пациента	Наиболее информативна при наличии симптомов “острого живота ”: при динамической или механической непроходимости кишечника (горизонтальные уровни жидкости в брюшной полости); при перфорации желудка или кишечника (скопление газа под куполом диафрагмы); при остром панкреатите (сегментарное скопление газа в тощей кишке и симптом “дежурной петли”).
Искусственное контрастирование пищевода, желудка и кишечника путем приема внутрь водной взвеси бария сульфата (“контрастный завтрак”)	Является наиболее распространенным способом рентгенологического исследования этих органов. Этот метод позволяет изучить строение пищеварительного канала практически на всем его протяжении, хотя наиболее ценная информация может быть получена при исследовании пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки. Петли тонкой кишки заполняются контрастным веществом в течение 3–5 ч, слепая и восходящая ободочная кишка – 6–9 ч, а вся толстая кишка – через 24 ч после приема бария внутрь. С помощью перорального приема контрастного вещества невозможно добиться “тугого” наполнения тонкой и толстой кишки, поэтому можно изучить только рельеф слизистой оболочки и моторную функцию кишечника, диагностировать различные дискинезии тонкой кишки, острый энтерит, механическую и динамическую непроходимость тонкого кишечника, болезнь Крона.
Чреззондовое введение бариевой взвеси в тощую кишку или ретроградно в подвздошную кишку	Более информативно и проводится в специализированных гастроэнтерологических клиниках. При таком способе исследования обнаруживаются неравномерное, прерывистое сужение кишки, деформация ее контуров, ригидность стенки, глубокие язвы , стриктуры, свищи, ограниченная подвижность кишечной стенки, а также зернистость рельефа слизистой по типу “булыжной мостовой”.
Ирригоскопия	Является одним из основных способов диагностики воспалительных процессов и нарушений функции кишечника, пороков развития кишечника, злокачественных новообразований и заключается в ретроградном введении контрастного вещества через прямую кишку с помощью аппарата Боброва. Это позволяет добиться тугого наполнения толстой кишки и подробно изучить положение, форму, размеры и особенности ее контура. После дефекации и опорожнения толстой кишки в условиях малого наполнения органа изучают рельеф и мелкие патологические изменения слизистой оболочки. Для лучшего контрастирования в пищевод, желудок или толстый кишечник дополнительно вводят газ (пневмография), а также сочетают эту методику с введением газа (закиси азота, углекислого газа) вокруг исследуемого органа (париетография). Перед ирригоскопией необходимо провести пальцевое исследование прямой кишки и ректороманоскопию. Ирригоскопию назначают не раньше чем через 48–72 ч после ректороманоскопии. Подготовка пациента к ирригоскопии: исключить из питания газообразующие продукты (овощи, фрукты, молочные, дрожжевые продукты, черный хлеб, фруктовые соки) и обеспечить обильное питье (до 2 л в сутки) за 2–3 дня до исследования (для профилактики метеоризма и получения достоверного результата); принять слабительные средства: 20–30 г магния сульфата, 2–3 таб. бисакодила или 30–60 мл касторового масла в 12.00–13.00 дня накануне исследования (обеспечивается тщательное очищение верхних отделов толстой кишки). Если у пациента понос – касторовое масло противопоказано; пациенту разрешен завтрак, обед и ужин вечером накануне исследования (образовавшиеся фекалии будут выведены утром накануне исследования с помощью очистительной клизмы); сделать по 2 очистительные клизмы – вечером накануне исследования и утром (не позднее, чем за 2 ч до исследования), с интервалом в 1 ч (обеспечивается очищение нижнего отдела толстой кишки); проводить пациента в рентгенологический кабинет к назначенному времени. Выполнение процедуры: с помощью клизмы вводят взвесь бария сульфата (36–37 о С) до 1,5 л, приготовленную в рентгенкабинете; проводят серию снимков; предупреждают пациента об изменении цвета кала и трудном опорожнении кишечника.
Метод двойного контрастирования	Раздувание воздухом толстого кишечника после введения в него небольшого количества бария – также используют при исследовании толстого кишечника.

Эндоскопические методы исследования кишечника

Колоноскопия

В последние годы в связи с использованием специальных гибких эндоскопов на волоконной оптике колоноскопия стала одним из важнейших диагностических методов.

Наряду с рентгенологическим исследованием эндоскопия в настоящее время рассматривается как основной метод диагностики заболеваний желудка и кишечника на самых ранних стадиях их развития.

Колоноскопию применяют для диагностики следующих заболеваний:

рак толстой кишки;
неспецифический язвенный колит;
болезнь Крона с возможным поражением толстой кишки;
полипы толстой кишки с возможной малигнизацией;
кишечное кровотечение неустановленной этиологии.

Среди всех известных инструментальных методов исследования только при эндоскопии можно детально изучить самые мельчайшие изменения слизистой оболочки, распознать источники кровотечений, осуществлять динамическое наблюдение за течением патологических процессов. Кроме того, с помощью эндоскопии можно проводить различные хирургические и терапевтические манипуляции непосредственно под зрительным контролем.

Метод колоноскопии достаточно безопасен, но его проведение требует специальных навыков из-за анатомических особенностей толстой кишки, имеющей ряд естественных изгибов и физиологических сфинктеров. Перед колоноскопией целесообразно провести ректороманоскопию и пальцевое исследование прямой кишки.

Результаты колоноскопии в значительной мере зависят от качества подготовки пациента к исследованию.

Подготовка пациента к плановой колоноскопии:

объяснить пациенту цель и ход предстоящего исследования и получить его согласие на процедуру (объяснить пациенту, что во время процедуры все интимные области будут прикрыты);
за 3 дня до исследования рекомендуется бесшлаковая диета № 4 (предупреждение метеоризма и обеспечение достоверного результата исследования);
пациент принимает раствор сульфата магния 25% 60 мл в 12.00–13.00 дня накануне исследования. Разрешен завтрак, обед и ужин вечером накануне исследования;
вечером накануне исследования делают несколько очистительных клизм (до “чистой воды”);
делают очистительную клизму утром, за 2 ч до исследования (клизма, сделанная более чем за 2 ч до исследования, не обеспечивает необходимого очищения слизистой кишки к моменту исследования; клизма, сделанная менее чем за 2 ч до исследования, изменяет состояние слизистой оболочки);
провести премедикацию по назначению врача за 20–30 мин до исследования;
проводить пациента в эндоскопический кабинет.

Исследование проводит врач в положении пациента лежа на левом боку. После исследования пациенту необходимо обеспечить наблюдение и покой.

При необходимости во время колоноскопии может быть проведена прицельная биопсия слизистой оболочки толстого кишечника.

Ректороманоскопия

Посредством ректороманоскопии можно обнаружить патологические изменения слизистой оболочки (злокачественные и доброкачественные новообразования, воспалительные процессы, изъязвления, геморрой, фистулы). При исследовании можно получить мазки и соскобы со слизистой оболочки для бактериологического и цитологического исследования, проводить биопсию, некоторые терапевтические и хирургические манипуляции.

Подготовка пациента к исследованию:

Исследование проводит врач в положении пациента на спине с приподнятыми и раздвинутыми нижними конечностями (при использовании гибкого ректоскопа) или коленно-локтевом положении (при использовании жесткого ректоскопа). Ректоскоп вводят на глубину 25–30 см.

После исследования пациенту необходимо обеспечить наблюдение и покой.

Лапароскопия

Лапароскопия – это метод визуального исследования брюшной полости через эндоскоп (лапароскоп), вводимый через брюшную стенку. Осмотр брюшной полости при необходимости сочетается с прицельной биопсией печени и иногда поджелудочной железы.

Лапароскопию проводят для срочного установления диагноза и экстренного хирургического вмешательства (например, перитонит или асцит неясного происхождения, подозрение на мезентериальный тромбоз и инфаркт кишечника), а также для проведения эндоскопических операций на органах брюшной полости.

Лапароскопия позволяет определить размеры некоторых органов брюшной полости, оценить характер их поверхности, цвет серозной оболочки, наличие очаговых поверхностных образований и т. п.

Поскольку лапароскопия является инвазивным методом, она проводится только в условиях хирургического стационара с соблюдением всех правил асептики и антисептики.

Противопоказания к проведению лапароскопии:

сердечная и тяжелая дыхательная недостаточность;
острый инфаркт миокарда и нестабильная стенокардия;
геморрагические диатезы, выраженная анемия и т. д.

480 руб. | 150 грн. | 7,5 долл. ", MOUSEOFF, FGCOLOR, "#FFFFCC",BGCOLOR, "#393939");" onMouseOut="return nd();"> Диссертация - 480 руб., доставка 10 минут , круглосуточно, без выходных и праздников

Михайлова, Олеся Николаевна. Теоретические и практические аспекты профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят раннего постнатального периода: диссертация... кандидата ветеринарных наук: 06.02.02 / Михайлова Олеся Николаевна; [Место защиты: Кур. гос. с.-х. акад. им. И.И. Иванова].- [Курск], 2013.- 159 с.: ил. РГБ ОД, 61 14-16/47

Введение

1.0 Обзор литературы 8

1.1 Желудочно-кишечные заболевания телят раннего постнатального периода: этиология, клинические и эпизоотологические особенности 8

1.2 Профилактика и лечение желудочно-кишечных заболеваний телят 20

1.3 Применение иммуностимуляторов при желудочно-кишечных заболеваниях новорожденных телят 31

2.0 Собственные исследования 34

2.1 Материал и методы исследований 34

3.0 Результаты собственных исследований 36

3.1 Теоретическое обоснование методологии диссертационного исследования 36

3.2 Выяснение причин и особенностей течения и проявления желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят 38

3.3. Теоретическое и экспериментальное обоснование получения нового иммунометаболического препарата на основе янтарной кислоты и левамизола 44

3.3.1 Изучение влияния комплексного препарата (левамизола янтарного) на гематологические, иммунологические и биохимические показатели новорожденных телят 48

3.4 Влияние левамизола янтарного на показатели заболеваемости диареей 55

3.5 Эффективность левамизола янтарного для коррекции обменных и иммунных процессов глубокостельных коров 56

3.6 Производственное испытание эффективности левамизола янтарного для профилактики желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят 61

3.7 Эффективность комплексных препаратов янтарной кислоты для профилактики и лечения диареи новорожденных телят при пероральном применении 68

3.7.1 Теоретическое и экспериментальное обоснование возможности сочетанного применения янтарной кислоты, АСД второй фракции ийодинола 68

3.7.2 Влияние янтарной кислоты в сочетании с АСД второй фракции, в комплексе с йодинолом на гематологические, иммунологические и биохимические показатели клинически здоровых телят при оральном применении 70

3.7.3 Эффективность перорального применения состава на основе янтарной кислоты и АСД для профилактики и в комплексе с йодинолом в клинике лечения диареи новорожденных телят 73

3.7.4 Эффективность перорального применения состава на основе янтарной кислоты и АСД для профилактики и в комплексе с йодинолом при лечении диареи новорожденных телят с выраженным токсикоинфекционным синдромом 75

3.8 Результаты производственного опыта по оценке эффективности научных разработок для профилактики диарей у новорожденных телят 77

4.0 Обсуждение результатов исследований 81

5.0 Выводы 104

6.0 Практические предложения 106

7.0 Список использованной литературы 107

Приложение 143

Введение к работе

Актуальность темы. Желудочно-кишечные заболевания, проявляющиеся синдромом диареи, имеют массовый характер и причиняют большой экономический ущерб промышленному животноводству. Несмотря на большое внимание, уделяемое наукой и практикой проблеме профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят, существенного улучшения ситуации нет. Телята, переболевшие в раннем возрасте диареей в дальнейшем отстают в росте и, как правило, подвержены респираторной патологии.

Ведущей причиной массовых желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят являются инфекционные патогены, вирулентность которых повышается при пассировании через организм восприимчивых животных. При диареях новорожденных телят весьма трудно определить ведущую роль того или иного патогена. В этой связи попытки профилактировать эти заболевания с применением специфических средств не всегда имеют положительный результат. В то же время широко практикуемое применение средств химио- и антибиотикотерапии зачастую ведет к селекции лекарственно устойчивых штаммов микроорганизмов.

Устойчивость телят к диареям полностью определяется активностью колострального иммунитета, который находится в прямой зависимости от качества молозива (Мищенко В.А. с соавт.2004). Данные последних лет свидетельствует о том, что в условиях промышленного ведения животноводства в молозиве коров наблюдается резкое снижение факторов иммунной защиты, в результате чего у новорожденных телят отмечается дефицит гуморальной системы иммунитета (Воронин Е.С., Шахов А.Г.,1999). Принимая во внимание, что нарушения обменных и иммунных процессов лежат в основе клинического проявления всех патофизиологических состояний, современная концепция профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний должна включать обязательное применение иммунометаболических средств.

Все вышеизложенное определило выбор темы диссертационного исследования, посвященного вопросам поиска эффективных средств профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний с диарейным синдромом.

Цель исследований. Основной целью диссертационного исследования явилось теоретическое и экспериментальное обоснование получения и применения препаратов янтарной кислоты в системе мер профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят с диарейным синдромом.

Для реализации поставленной цели были определены следующие задачи:

Изучить особенности проявления и течения желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят;

Теоретически и экспериментально обосновать способы получения комплексных препаратов с иммунометаболической и антиинфекционной активностью;

Изучить эффективность применения препаратов янтарной кислоты для стимуляции иммунобиохимических процессов, профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят.

Определение производственной эффективности авторских подходов профилактики и лечения диарей у телят.

Научная новизна. Научно обоснованы, разработаны и запатентованы новые составы комплексных препаратов иммунометаболической направленности на основе янтарной кислоты и определена эффективность их применения для стимуляции обменных и иммунных процессов, профилактики дисбактериоза, лечения диареи у телят раннего постнатального периода.

Практическая значимость работы. В результате проведенных научных исследований практической ветеринарии предложены экономически выгодные, простые и эффективные средства и практические предложения по профилактике и лечению желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят. Результаты исследований вошли составной частью в проект временного наставления по применению левамизола янтарного, утвержденного директором Курского НИИ агропромышленного производства Россельхозакадемии и управлением ветеринарии Курской области.

Основные положения диссертационной работы, выносимые на защиту:

1. Причины, особенности проявления и течения желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят;

2. Теоретическое и экспериментальное обоснование получения новых составов с иммунометаболической, антиинфекционной и дезинтоксикационной активностью.

3. Результаты изучения эффективности применения новых препаратов в системе мер стимуляции обменных и иммунных процессов, профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят с диарейным синдромом.

Апробация и публикация результатов исследования. Материалы диссертационного исследования доложены и обсуждены на Международной научно-практической конференции Белгородской ГСХА « Проблемы сельскохозяйственного производства на современном этапе и пути его решения» - Белгород, 2012; на Международной научно-практической конференции Курской ГСХА «Агропромышленный комплекс: контуры будущего» - Курск, 2012; на Международной Донской аграрной научно-практической конференции «Актуальные проблемы обеспечения ветеринарного благополучия отрасли животноводства» - Зерноград, 2012; на Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарии и интенсивного животноводства» Брянской ГСХА – Брянск - 2013.

По материалам, представленным к защите диссертации опубликовано 7статей, в том числе 3 в рецензированных журналах.

Структура и объем диссертации.

Диссертационная работа изложена на 143 страницах компьютерного текста, иллюстрирована 24 таблицами, состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований и обсуждения их результатов, выводов, предложений производству, списка использованной литературы. Список использованной литературы включает 344 источника, в том числе 122 иностранных авторов.

Профилактика и лечение желудочно-кишечных заболеваний телят

По мнению Самохина В.Т. с соавт. (2002), Шахова А.Г.(2002) Биологический комплекм «мать-плод-новорожденный» следует рассматривать как единую систему при разработке рациональных методов профилактики и борьбы с неонатальными болезнями, т.к. существует прямая зависимость между состоянием обмена веществ, уровнем естественной резистентности организма коров, внутриутробным развитием плода, состоянием здоровья и сохранности новорожденных телят. Эта точка зрения является итогом многочисленных научных исследований, проведенных в разное время Ворониным Е.С. (1981) с соавт.(1989), Девришевым Д.А.(2000), Зароза В.Г. (1983), Касича А.Ю. (1987), Немченко М.И. с соавт. (1986), Семеновым В.Г.(2002), Сидоровым М.А.(1981, 1987), Сулеймановым С.М.(1999), Урбаном В.П., Неймановым И.Л.(1984), Федоровым Ю.Щ1988), Чекишевым В.М. (1985), Шарабриным И.Г.(1974), Шишковым В.П. с соавт.(1981,1985), Шкиль Н.А.(1997) и др.

Даже нормально развитые телята имеют ряд физиологических особенностей, которые делают их особо уязвимыми к желудочно-кишечным заболеваниям. В первую очередь это физиологический иммунодефицит.

У новорожденных иммунная система развита недостаточно, им свойственны низкая функциональная активность клеточного и неполноценность гуморального звеньев иммунитета. Компенсация возрастных дефицитов иммунной системы новорожденных в постнатальный период жизни происходит за счет клеточных и гуморальных факторов молозива. При их недостатке в молозиве иммунодефицит усугубляется (Воронин Е.С., Шахов А.Г., 1999; Девришев Д.А., 2000; Терехов В.И., 2002; Федоровым Ю.Н. 1988 и др.).

По мнению абсолютного большинства исследователей устойчивость телят к диареям определяется активностью колострального иммунитета, который находится в прямой зависимости от качества молозива, являющегося единственным источником иммуноглобулинов (Мищенко В.А. с соавт., 2005; Richou R„ 1981; Salt L.J., 1985; Selman J.E., 1979).

Наряду с антителами от матери новорожденному с молозивом передаются иммунологически активные клетки-лейкоциты (Виег А. е.а., 1971 Concha С. е.а.,1980; Selman J. 1979; SulingL. 1980; Smith Y. е.а., 1977; Tough D.F.e.a.,1996).

При своевременной, не позднее 2 часов после рождения, выпойке молозива, доля гаммаглобулинов в белках плазмы крови достигает 30-50%, что существенно снижает риск заболевания диареи. И наоборот, телят у которых к суточному возрасту количество гаммаглобулинов в крови не превышает 10% заболевают и погибают почти все.

О важности своевременной выпойки молозива новорожденным наиболее показательно свидетельствуют сопоставление клинических данных регистрации заболевания диареей у телят «ночников» и «дневных». Заболеваемость и гибель телят родившихся ночью значительно превышает показатели по «дневным» телятам (Мищенко В.А. с соавт., 2005). Выпойка молозива телятам «ночникам» проводится утром, то есть спустя 5-6 и более часов.

Сразу же после отела необходимо проверить молозиво на мастит. Важнейшим фактором в профилактике неонатальных диарей является время выпойки молозивом. Лучшее время первой выпойки - это появление сосательного рефлекса у теленка (у большинства 30-40 минут после рождения). При мастите у растелившейся коровы можно использовать молозиво от других коров. Рекомендуется иметь банк замороженного молозива.

Важным фактором, оказывающим влияние на уровень колострального иммунитета, является концентрация в молозиве иммуноглобулинов (Weaver D.e.a. 2000). У высокоудойных коров концентрация иммуноглобулинов в молозиве более низкая, чем у животных с меньшим удоем. У коров с нарушенными обменными процессами рождаются телята с аналогичным метаболическим симптокомплексом. Нарушения иммунометаболического статуса у матери оказывает прямое влияние на эмбриональное развитие плода, что может стать одной из причин развития вторичных иммунодефицитов, и как еле, следствие высокой заболеваемости.

Следующей особенностью, влияющей на склонность к заболеваемости диареями является стерильность кишечника при рождении. Теленок рождается слабо защищенным и, попадая в новую среду, насыщенную различными возбудителями болезней, легко инфицируется.

Основной путь заражения новорожденных телят алиментарный, в результате контакта с так называемой «хлевной» микрофлорой, представленной ассоциацией грамотрицательных и грамположительных микроорганизмов.

Условно-патогенная («хлевная») микрофлора разлагает молоко в желудке с образованием большого количества токсинов, которые раздражают слизистую кишечника.

Явление дисбактериоза отражает изменившиеся в кишечнике условия размножения молочнокислых и условно-патогенных микроорганизмов. Последнее, проникая в сычуг вытесняют мол очно-кислые микроорганизмы. Быстрое размножение условно-патогенных микроорганизмов сопровождается образованием большого количества токсических продуктов их жизнедеятельности.

Для компенсации физиологического дисбактериоза и более раннего становления колонизационной резистентности кишечника после первой дачи молозива новорожденным телятам рекомендуется назначение пробиотиков (Антипов В.А., 1981; Баженов А.Н. с соавт.,1986; Воронин Е.С. с соавт, 1994; Григорьев Г.И. с соавт.,2000; Грязнева Т.Н., 2005; Гудков А.В. с соавт., 1986; Девришев Д.А., 1988; Интизаров ММ., 1989; Карпов В.Н., 1987; Квасников Е.И. с соавт.,1975; Панин А.Н. с соавт., 1988; Perdigon G. е.а.2001; Shanahan F., 2001 и др.).

Пробиотики - биологические препараты, представляющие собой стабилизированные культуры симбионтных микроорганизмов или продукты их ферментации, обладающие антагонистической активностью по отношению к гнилостным и болезнетворным микроорганизмам, в т.ч. и к эшерихиям, в кишечнике.

Многокомпонентный состав и разностороннее фармакологическое действие позволяют применять пробиотики с высоким эффектом для профилактики и лечения колибактериоза телят, дисбактериозов, детоксикации отдельных эндогенных и экзогенных токсинов, создания неспецифической защиты кишечника, от патогенных бактерий (колонизационной резистентности кишечника). Это экологически безопасные, физиологичные препараты по фармакокинетике и фармакодинамике, технологичны для группового применения, не оказывают побочного действия, не накапливаются в органах и тканях животных, не вызывают привыкания со стороны патогенной микрофлоры (В.А. Антипов, 2001; А. Панин с соавт., 1993; Ю.Н. Проскурин, 2000; СИ. Парникова, 2002).

Раннее назначение новорожденным телятам пробиотических препаратов важно еще и потому, что нормальная микрофлора кишечника выступает в качестве первого стимулятора иммунной системы. Следует отметить, что лечебная эффективность пробиотиков при желудочно-кишечных заболеваний телят недостаточно высока. Противопоказанием к применению пробиотиков является недопустимость их сочетания с антибиотиками или другими противомикробными препаратами.

Голодная диета назначается при появлении признаков учащенной дефекации. Исключают 1-3 (по усмотрению ветеринарного специалиста) кормления молозивом (молоком), заменяя его электролитно-энергетическими растворами (в количестве 0,5 - 1,0 л) или отварами (настоями) лекарственных растений (R.J. Bywater, 1983). Для предотвращения обезвоживания и интоксикации больных телят предложено большое количество различных растворов электролитов как для выпаивания, так и для парентерального введения.

Средства химио-антибиотикотерапии остаются основной группой лекарственных веществ, применяемых при данных патологиях.

Антибактериальные препараты относятся к этиотропным средствам, которые избирательно подавляют рост микроорганизмов, что определяет их важнейшее свойство - специфичность по отношению к возбудителям инфекционных болезней телят. Наиболее важное место среди этих препаратов занимают антибиотики. Ковалев В.Ф. с соавт. (1988),. Витебский Э.Л. с соавт. (1998), Соколов В.Д. с соавт. (2000), Трошин А.Н. с соавт. (2003):

К числу высокоэффективных, антидиарейных средств относятся препараты нитрофуранового ряда. Обладая широким спектром биоактивности, нитрофураны, в отличие от антибиотиков способны повышать общую резистентность макроорганизма (Шипицын А.Г. с соавт., 1999).

В результате массового и зачастую безсистемного применения данной группы препаратов эффективность их заметно снизилась. Основной причиной этого является накапливание в природе лекарственнорезистентных штаммов условно-патогенных микроорганизмов.

Для преодоления лекарственной резистентности микроорганизмов чаще всего практикуется комбинация двух лекарственных препаратов и сочетание антибактериальной терапии с препаратами, усиливающими защитные силы организма.

Изучение влияния комплексного препарата (левамизола янтарного) на гематологические, иммунологические и биохимические показатели новорожденных телят

В данной серии опытов был использован состав препарата, включающий: 1% янтарной кислоты и 2%- левамизола. Способ получения комплексного препарата мы иллюстрируем следующим примером.

Для приготовления комплексного препарата использовали 950 мл деминерализованной воды, в которой при нагревании последовательно растворили 10,0 г янтарной кислоты и 20 г левамизола. Общий объем доводили до 1000 мл. добавлением деминерализованной воды. Полученный раствор имел рН = 4,5-4,7. После расфасовки препарата по флаконам провели стерилизацию. Стерилизация автоклавированием в режиме 1,0- 1,1 атм. в течение 30 минут не изменила физико-химических свойств препарата. Осадок не выпадал при хранении в течении 12 месяцев.

Научно-производственный опыт был проведен в СГЖ «Калининский».

В задачи исследований входило изучение влияния препарата (левамизола янтарного) на гематологические, иммунологические и биохимические показатели телят - нормотрофиков и телят - гипотрофиков.

С учетом имеющегося в нашем распоряжении клинического материала для проведения опыта были сформированы 4 группы телят. Первые две группы были сформированы из числа физиологически развитых телят. Еще в две группы отобрали телят этого же возраста, но из числа гипотрофиков.

Таким образом, проводя первую серию опытов, мы имели возможность изучить влияние препарата на организм физиологически развитых телят и животных с явными признаками иммунодефицита. Подтверждением последнему являлись данные фонового гомеостаза, отобранных для опытов телят, отображенные в таблицах 4,5,6,7.

Как и следовало ожидать, уже первые контрольные результаты исследований показали, что гематологические показатели, даже у физиологически развитых телят, находились на нижних значениях физиологической нормы для данной возрастной группы. Применение левамизола янтарного позволила активизировать обменные процессы, выразившиеся в повышении и нормализации уровня гемоглобина у телят -нормотрофиков. У телят - гипотрофиков опытной группы уровень содержания гемоглобина и количество эритроцитов, практически достигли фоновых показателей клинически здоровых сверстников. При проведении последующих исследований (спустя 2 недели) у телят из контрольных групп значимых изменений за этот период времени не произошло.

Исследованием уровня общего белка и белковых фракций в сыворотке крови телят установили, что содержание их в начале колебалось в нижних пределах физиологической нормы. Применение левамизола янтарного уже на третий день выявило тенденцию роста общего белка и у - глобулинов, которые максимального значения достигли на 7-й день, после чего наметилась тенденция плавного снижения. Тем не менее, на 14-й день контрольных исследований показатели содержания общего белка и гамма-глобулиновой фракции были достоверно более высокими, нежели у их сверстников из контрольных групп (Р 0,05). В процессе исследований отмечено также незначительное повышение уровня альбуминов, фракций а-и р-глобулинов.

Таким образом, применение левамизола янтарного способствовала улучшению гематологических показателей и белкового обмена.

Повышение уровня гамма глобулиновой фракции свидетельствовало о повышении резистентности организма.

Применение препарата позволило значительно улучшить биохимические показатели крови (таблица 7). Так, спустя 2 недели у физиологически развитых телят содержание общего кальция в сыворотке крови после составило 3,02±0,11, против 2,41±0,19 у контрольных животных (Р 0,05); а у телят - гипотрофиков, соответственно 2,28±0,10 и 1,57±0,18 (Р 0,005). Содержание неорганического фосфора также имело выраженную тенденцию роста. Так, у телят - нормотрофиков содержание неорганического фосфора увеличилось на 7 день до 2,04±0,15, на 14 день до 2,09±0,16, что на 11,3% и 12,4% было выше, чем у животных контрольной группы. Аналогичная закономерность просматривалась и в показателях содержания неорганического фосфора у телят - нормотрофиков. Нормализация кальций фосфорного обмена значительно улучшило щелочной резерв крови. Так, у телят - нормотрофиков он повысился с 29,4±2,3 до 43,7±3,1 об% С02 (на 14 день), а у телят - гипотрофиков с 14,3+2,1 об% С02 до 29,1±2,8 об% С02. Повышение и нормализация содержания кальция, фосфора и резервной щелочности крови не могло не указывать на улучшение минерального обмена веществ в целом, что имеет важное значение в вопросе повышения общей резистентности организма. Клинические наблюдения свидетельствовали о том, что животные опытных групп лучше росли и были более спокойными, нежели их сверстники из контрольных групп. Средний прирост живой массы клинически здоровых телят составил 307г, а у контрольных - 250г. В целом абсолютный прирост живой массы клинически здоровых опытных телят составил 9,2+0,3 кг, против 7,5+0,4 кг у контрольных, а у отстававших в развитии соответственно 5,0 ±0,2 кг и 2,4+0,2 кг (таблица 8).

Как известно, одним из факторов неспецифической защиты организма является фагоцитоз. При анализе результатов фагоцитарной реакции установлено, что уже на 3 день фагоцитарная активность нейтрофилов как у клинически здоровых, так и гипотрофиков на 13% и 5,8% выше, чем до введения препарата, и на 12% и 5,2% выше, по сравнению с контрольными животными.

Бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови, отражающие, в общем, гуморальные механизмы естественной резистентности, уже на 3 день после иммунизации была выше, чем у контрольных животных (таблица 9).

Динамика иммунологических показателей свидетельствует о том, что левамизол янтарный обеспечил выраженную тенденцию роста фагоцитарной активности нейтрофилов и бактерицидной активности сыворотки крови. На 14 сутки эти показатели не претерпели выраженных изменений.

Влияние янтарной кислоты в сочетании с АСД второй фракции, в комплексе с йодинолом на гематологические, иммунологические и биохимические показатели клинически здоровых телят при оральном применении

Для проведения опытов мы использовали состав на основе 1% янтарной кислоты, 4% АСД второй фракции в комплексе с йодинолом в соотношении 3:1. По принципу аналогов в СПК «Калининский» были сформированы три группы телят. Первой опытной группе (п=5) выпаивался янтарный биостимулятор, второй (п=5) янтарный биостимулятор в комплексе с йодинолом. Третья группа (п=5) была контрольной. Телятам этой группы выпаивался водный раствор йодинола(3:1). Препараты выпаивались в объеме 100 мл, один раз в сутки в течение 5 дней за 30 минут до выпойки молока.

Отбор проб крови для проведения исследований провели до, на третьи и четырнадцатые сутки после выпаивания препаратов. В таблицах - 19, 20,21 мы приводим сведения о динамике гематологических, иммунологических и биохимических исследованиях.

Результаты гематологических исследований свидетельствовали о том, что применение препаратов янтарной кислоты оказало позитивное влияние на уровень эритроцитов и насыщенность их гемоглобином. Уровень содержания гемоглобина на 3 и 14 сутки после курса применения препаратов был достоверно выше у опытных телят по отношению к их сверстникам из контрольной группы.

Показатель резервной щелочности у телят контрольной групп во все периоды исследований был ниже физиологической нормы, в то время как у животных обеих опытных групп он находился в пределах физиологических показателей. Это указывало на то, что пероральное применение препаратов янтарной кислоты обеспечило устранение метаболического ацидоза. Устранение метаболического ацидоза оказало позитивное влияние и на белковый обмен. Уровень общего белка в крови телят опытных групп находился в пределах средних физиологических показателей, в то время как у их сверстников он был чуть выше нижней границы.

В контрольные периоды исследований после курса применения препаратов у телят обеих опытных групп показатели бактерицидной и лизоцимной активности были достоверно выше, чем у особей из контрольной группы. Это свидетельствовало о позитивном влиянии препаратов янтарной кислоты на факторы естественной резистентности, что имеет важное значение в отношении устойчивости организма к эндогенной инфекции, в том числе и к заболеванию диареей.

Результаты производственного опыта по оценке эффективности научных разработок для профилактики диарей у новорожденных телят

Исходя из того, что устойчивость новорожденных телят к диареям полностью определяется активностью колострального иммунитета, который напрямую зависит от качества молозива, важная роль должна отводиться здоровью глубокостельных коров. Однако данные ретроспективных, в том числе и нами проведенных исследований, свидетельствуют о том, что у большинства коров в последние месяцы стельности развиваются глубокие патобиохимические процессы. Обменные и иммунные процессы взаимосвязаны. Это обстоятельство послужило нам основанием разработки комплексного препарата, обладающего иммунометаболической активностью. В ходе научно-производственного опыта было установлено, что применение левамизола янтарного обеспечивает эффективную коррекцию обменных и иммунных процессов у глубокостельных коров и телят. Это позитивно отразилось на показателях заболеваемости новорожденных телят диареей.

В свою очередь, оральное применение йодинол - янтарного биостимулятора оказалось достаточно эффективным подходом для купирования диарейного синдрома у новорожденных телят.

Научно-производственный опыт был проведен в СПК «Калининский» в период с января по май 2013 года. Порядок проведения научно-производственного опыта включал проведение мероприятий превентивного характера как на глубокостельных коровах, так и на новорожденных телятах.

Объектом для проведения научно- производственного опыта являлись глубокостельные коровы и новорожденные телята до 10-дневного возраста.

При проведении курса превентивной иммунометаболической терапии мы руководствовались уже апробированной схемой применения левамизола янтарного, предусматривающей трехкратное внутримышечное введение препарата глубокостельным коровам в объеме 10,0 мл с интервалом 10 дней.

При возникновении диареи у телят выпойка молозива или молока заменялась дачей йодинол - янтарного биостимулятора (100 мл) в смеси с солевым раствором с одновременным однократным введением левамизола янтарного в дозе 2,0 мл. Концентрация янтарной кислоты в препарате, применяемом для коров и телят была 1,5%.

Из числа глубокостельных коров, были сформированы две подопытные группы. Коров опытной группы (п=103) подвергли обработке левамизолом янтарным. В контрольную группу было отобрано 95 коров.

По результатам клинического наблюдения за телятами были получены следующие данные, которые представлены в таблице 24.

При клиническом наблюдении установлено, что заболевание диареей телят, полученных от коров контрольной группы в марте и апреле регистрировалось практически у всех животных. При этом диарея зачастую протекала с симптомами выраженной интоксикации.

У телят, рожденных от коров опытной группы, диарея протекала преимущественно в легкой и средней степени тяжести.

Следует отметить такую особенность. У телят, рожденных от коров, контрольной группы диарейный синдром обычно развивался на 2 реже 3 сутки. В то время как у телят, рожденных от коров опытной группы, диарея проявлялась на 5-6 сутки.

Для лечения диареи нами был использован йодинол-янтарный биостимулятор. При этом установлено, что однократное выпаивание йодинол - янтарного биостимулятора телятам с симптомами легкого течения диареи, как правило, было достаточно для ее прекращения. При средней тяжести течения диареи требовалось две, реже три выпойки данного состава с интервалом в 5-6 часов.

В клинике лечения диареи с выраженным токсическим симптомокомплексом весьма эффективным оказалось внутривенное введение 100 мл реамберина (1,5% раствор янтарной кислоты) с добавлением в его состав 50 мл 40% глюкозы. Выбор реамберина для снятия симптомов токсикоза неслучаен. Дезинтоксикационный раствор «Реамберин» содержит в своем составе 1,5 % янтарной кислоты в виде ее соли - сукцината натрия. Практическое применение «Реамберина» в медицине и ветеринарии свидетельствуют о том, что он обладает исключительно высоким терапевтическим эффектом при токсикоинфекционных заболеваниях. Однако опыт его применения свидетельствует о том, что он может оказывать и побочные действия на сердечную и дыхательную системы. Для инфузий он применяется внутривенно, капельно. Очевидно, что капельное введение препарата продуктивным животным трудно выполнить в производственных условиях.

По результатам наших наблюдений включение в состав инфузионного раствора глюкозы позволило снизить риск побочного действия реамберина на сердечно-сосудистую и дыхательную систему при медленном (через тонкую иглу) струйном методе введения. Данный состав нами был апробирован на 17 телятах. Не в одном случае побочного действия выявлено не было.

Результаты применения реамберина в сочетании с глюкозой обеспечивали благоприятный «перелом» интоксикационного синдрома. Как правило, после первого введения инфузионного состава клиническое состояние телят настолько улучшалось, что уже не вызывало опасения в отношении неблагоприятного исхода. Следует отметить, что применение других инфузионных растворов, в частности глюкозо-солевых, в клинике снятия токсического синдрома не давало столь выраженного положительного эффекта.

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Подобные документы

Этиология и патогенез дискинезии желчевыводящих путей, ее формы и особенности протекания заболевания у детей. Острый и хронический холецистохолангит: причины и клиническая картина болезни, методы диагностики и лечение. Этиопатогенез желчекаменной болезни.

реферат , добавлен 03.05.2009

Гипомоторный (гипокинетический, гипотонический) и гипермоторный (гиперкинетический, гипертонический) типы дискинезии желчевыводящих путей. Патогенез заболевания. Нарушение нейрогуморальной регуляции желчевыводящих путей. Течение дискинезий у детей.

реферат , добавлен 01.03.2017

Влияние физических упражнений на систему органов пищеварения, методики их применения при хроническом гастрите, язвенной болезни желудка и дискинезии желчевыводящих путей. Опытно-экспериментальная работа по использованию лечебной физической культуры.

дипломная работа , добавлен 25.05.2015

Главная функция и строение органов пищеварения: пищевод, желудок и кишечник. Регулирование процессов пищеварения вегетативной нервной системой. Причины возникновении боли в животе, запора и поноса. Методы лечения эзофагита, пищевых отравлений и гастрита.

реферат , добавлен 16.01.2011

Экпериментальное исследование причин возникновения заболеваний системы пищеварения. Болезни полости рта: стоматит, тонзиллит, кариес. Этиология болезней пищевода и желудка (эзофагит, гастрит, флегмона). Болезни кишечника: колит, инфаркт кишки, аппендицит.

реферат , добавлен 15.10.2010

Основные виды острых расстройств пищеварения у детей. Причины возникновения простой, токсической и парентеральной диспепсии, особенности их лечения. Формы стоматитов, их патогенез. Хронические расстройства питания и пищеварения, их симптомы и лечение.

презентация , добавлен 10.12.2015

Виды дискинезии желчевыводящих путей. Причины и факторы риска ее развития. Клинические и диспепсические проявления, основные симптомы заболевания, осложнения и последствия. Методы диагностики и лечения. Основные принципы сестринской помощи при ДЖВП.

курсовая работа , добавлен 19.03.2016

Изучение этиологии, патогенеза и клинической картины хронического неязвенного колита. Дифференциальная диагностика хронического неязвенного колита и рака толстой кишки. Принципы терапии заболевания. Лечение моторных расстройств и дискинезии толстой кишки.

реферат , добавлен 17.03.2016

Изучение этиологии, диагностики и основных методов лечения заболеваний системы пищеварения: язвенная болезнь желудка и двенадцатипёрстной кишки, хронический гастрит и энтероколит, желчнокаменная болезнь, хронический холецистит, воспаление желчных путей.

Catad_tema Дисбактериоз - статьи

Кишечные бактерии, пробиотики и перспективы их применения для лечения заболеваний желудочно-кишечного тракта

Ю.О. Шульпекова
Кафедра пропедевтики внутренних болезней лечебного факультета ММА им. И.М. Сеченова, Москва Рассматриваются особенности состава и роль кишечных бактерий-симбионтов в поддержании состояния здоровья. Обсуждается корректность применения термина “дисбактериоз” в клинической практике; указаны заболевания и состояния, которые нередко ошибочно трактуют как дисбактериоз. Приведен краткий обзор заболеваний, при которых эффективность некоторых пробиотиков подтверждена результатами сравнительных исследований. Представлены показания к применению современного комбинированного пробиотического препарата Линекс, его преимущества и режимы дозирования.

История изучения роли кишечной микрофлоры в поддержании здоровья человека берет свое начало в конце XIX века, когда получили развитие представления о болезни как следствии кишечной “аутоинтоксикации”.

Но и сегодня приходится признать, что мы еще мало знаем о взаимодействии нашего организма и населяющих его бактерий, и очень трудно оценить состав микрофлоры, населяющей желудочно-кишечный тракт (ЖКТ), с позиций “нормы” и “патологии”.

Состав и физиологическое значение микрофлоры кишечника

В ЖКТ человека обитают микроорганизмы более 400 видов. Содержание колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 мл внутрипросветного содержимого по мере продвижения от желудка к толстой кишке увеличивается с 10 2–3 до 10 11–12 . Одновременно возрастает доля анаэробных микроорганизмов и снижается их окислительный потенциал.

Кишечные бактерии представлены основной (доминирующей, или резидентной), сопутствующей и остаточной популяциями.

Доминирующая популяция состоит главным образом из бактерий семейств Lactobacillus, Bifidobacteria и бактероидов.

Сопутствующая популяция представлена кишечной палочкой, эубактериями, фузобактериями, энтерококками и пептококками.

В остаточную популяцию входят дрожжеподобные грибы, бациллы, клостридии, протей и др. Часть указанных микроорганизмов обладает более или менее выраженными патогенными свойствами. Принято считать, что у здорового человека характеристики патогенных или условнопатогенных имеют не более 15% кишечных микробов.

В верхних отделах ЖКТ состав микрофлоры сходен с таковым ротоглотки; заметная доля ее представлена стрептококками. В дистальном направлении постепенно возрастает содержание лактобацилл, а в толстой кишке преобладают бифидобактерии.

По современным представлениям, основную роль в поддержании нормального физиологического состояния микрофлоры ЖКТ играют бактерии семейств Lactobacillus и Bifidobacteria, которые представляют собой грамположительные неспорообразующие анаэробы, не обладающие патогенными свойствами. Важной характеристикой этих микроорганизмов служит сахаролитический тип метаболизма. В процессе сбраживания углеводов под действием ферментов лактобацилл и бифидобактерий образуются короткоцепочечные жирные кислоты – молочная, уксусная, масляная, пропионовая. В присутствии этих кислот тормозится развитие условно-патогенных штаммов, которые в большинстве своем обладают протеолитическим типом метаболизма. Подавление протеолитических штаммов сопровождается угнетением гнилостных процессов и подавлением образования аммиака, ароматических аминов, сульфидов, эндогенных канцерогенов. Благодаря выработке жирных кислот происходит регуляция рН внутрикишечного содержимого.

Короткоцепочечные жирные кислоты играют важную роль в регуляции метаболизма. Поступая в системный кровоток, они обеспечивают до 20% ежедневной энергетической потребности организма, а также служат главным поставщиком энергии для эпителия кишечной стенки.

Масляная и пропионовая кислоты повышают митотическую активность и регулируют дифференцировку эпителия. Молочная и пропионовая кислоты регулируют всасывание кальция. Большой интерес вызывает их роль в регуляции обмена холестерина и метаболизма глюкозы в печени.

Лактобациллы и бифидобактерии синтезируют аминокислоты, белки, витамины В1, В2, В6, В12, К, никотиновую и фолиевую кислоты, вещества с антиоксидантной активностью.

Бактерии основной популяции играют важную роль в переваривании компонентов молока. Лактобациллы и энтерококк способны расщеплять лактозу и молочные белки. Выделяемая бифидобактериями фосфопротеинфосфатаза участвует в метаболизме казеина. Все эти процессы протекают в тонкой кишке.

Виды лактобацилл, населяющих кишечник, включают: L. acidophilus, L. casei, L. bulgaricus, L. plantarum, L. salivarius, L. rhamnosus, L. reuteri. Среди бифидобактерий выделяют B. bifidum, B. longum, B. infantis.

Из аэробных микроорганизмов, относящихся к сопутствующей популяции, серьезная роль в микробном биоценозе кишечника принадлежит негемолитической кишечной палочке – Escherichia coli, которая вырабатывает витамины (В1, В2, В6, B12, К, никотиновую, фолиевую, пантотеновую кислоты), участвует в обмене холестерина, билирубина, холина, желчных и жирных кислот, опосредованно влияет на всасывание железа и кальция.

По мере расширения знаний об особенностях жизнедеятельности кишечной микрофлоры становится все более отчетливым представление о ее важной роли в поддержании напряженности местного и системного иммунитета.

В кишечнике существуют защитные механизмы, препятствующие избыточному размножению и внедрению микрофлоры. К их числу относят целостность эпителия и щеточную каемку (расстояние между микроворсинками которой меньше размеров бактерии), продукцию иммуноглобулина А, присутствие желчи, наличие пейеровых бляшек и пр.

Благодаря выработке веществ с антибактериальной активностью (бактериоцинов, короткоцепочечных жирных кислот, лактоферрина, лизоцима) нормальная микрофлора обеспечивает местную защиту от избыточного размножения условно-патогенных и внедрения патогенных микроорганизмов. Присутствие постоянного микробного раздражителя и контакт с макрофагами и лимфоцитами в области пейеровых бляшек обеспечивают достаточную напряженность местного иммунитета, выработку иммуноглобулина А и высокую фагоцитарную активность. В то же время постоянный контакт с иммунными клетками лежит в основе иммунологической толерантности.

Компоненты кишечных бактерий проникают в системный кровоток, поддерживая таким образом необходимую степень напряженности системного иммунитета и обеспечивая его “знакомство” с микрофлорой окружающей среды.

Однако даже те кишечные бактерии, которые рассматриваются как непатогенные, не обладающие отчетливой способностью к адгезии, инвазии и продукции токсинов, при несостоятельности местных механизмов защиты теоретически способны вызывать повреждение стенки кишечника, а, возможно, также системную инфекцию. Поэтому назначение лекарственных препаратов на основе кишечных бактерий (пробиотиков) всегда должно быть обоснованным.

Причины нарушений состава кишечной микрофлоры

Состав микробной популяции кишечника даже у здорового человека подвержен изменчивости и, по-видимому, отражает способность приспособления организма к особенностям питания и образа жизни, климатическим факторам.

Следует признать, что общее понятие “дисбактериоз”, до недавнего времени широко применявшееся для обозначения нарушений состава кишечной микрофлоры, не отражает в полной мере сути подобных изменений, не позволяет отчетливо сформулировать диагноз и определить тактику лечения.

Так, можно выделить отдельные заболевания и синдромы, которые нередко ошибочно трактуются как дисбактериоз:

синдром избыточного бактериального роста;
антибиотико-ассоциированная диарея;
инфекция Clostridium difficile (псевдомембранозный колит);
синдром раздраженного кишечника;
“диарея путешественников”;
дисахаридазная недостаточность;
кандидоз кишечника на фоне иммунодефицитных состояний;
стафилококковый энтерит и пр.

Каждое из этих заболеваний имеет свою причину, определенные факторы риска, клиническую картину, диагностические критерии и тактику лечения. Безусловно на фоне этих заболеваний могут развиваться вторичные нарушения микробного состава кишечника.

Пожалуй, наиболее часто в клинической практике встречается синдром избыточного бактериального роста, характеризующийся уменьшением количества анаэробов (особенно бифидобактерий), увеличением общего числа функционально неполноценных форм E. coli (“лактозо-”, “маннит-”, “индолоотрицательных”), содержания гемолитических форм E. coli и созданием условий для размножения Candida spp.

Синдром избыточного бактериального роста развивается на фоне нарушений просветного или пристеночного пищеварения (врожденный дефицит ферментов, панкреатит, глютеновая энтеропатия, энтериты), пассажа кишечного содержимого (межкишечные свищи, “слепые петли” кишечника, дивертикулы, нарушения перистальтики, кишечнаянепроходимость); снижения защитных свойств слизистой оболочки (анацидные состояния, иммунодефициты); ятрогенных воздействий на микрофлору кишечника (применение кортикостероидов, цитостатиков, особенно у ослабленных и пожилых пациентов).

Избыточное размножение бактерий наблюдается главным образом в тонкой кишке, поскольку здесь создается наиболее благоприятная питательная среда. Проявления синдрома избыточного бактериального роста, такие как метеоризм, урчание, переливание в животе, жидкий стул, гиповитаминоз, похудание, нередко выходят на первый план в клинической картине основных заболеваний, перечисленных выше.

Тесты, подтверждающие наличие патологических нарушений состава микрофлоры

Как и в диагностике других заболеваний, для оценки изменений кишечной микрофлоры необходимо применять адекватные методы.

Посев кала на дисбактериоз, распространенный в России, нельзя признать информативным тестом, тем более что патологические изменения микрофлоры в основном затрагивают тонкую кишку. Этот метод представляет ценность с точки зрения исключения кишечных инфекций, а также инфекции C. difficile.

Весьма высокой точностью обладает микробиологическое исследование посева аспирата содержимого тонкой кишки.

Дыхательный тест с 14С-ксилозой, водородные тесты с лактулозой и глюкозой позволяют выявлять наличие избыточного бактериального роста в кишечнике, однако не дают представлений о составе микрофлоры.

Определение спектра жирных кислот в кале методом газожидкостного хроматографического анализа дает возможность приблизительно оценить количественное соотношение различных типов кишечных бактерий.

Применение пробиотиков

В начале XX столетия великий русский ученый Мечников И.И. выдвинул гипотезу о том, что высокое содержание лактобацилл в кишечном биоценозе является необходимым условием здоровья и долголетия человека. Мечников И.И. проводил опыты по использованию в лечебных целях живой культуры бифидобактерий.

В последующие годы продолжались разработки лекарственных препаратов на основе микроорганизмов, обладающих полезными свойствами, – так называемых пробиотиков.

В качестве потенциального лечебного средства лактобациллы первоначально привлекали к себе наибольшее внимание как бактерии с наиболее хорошо изученными полезными свойствами. С 1920-х гг. культура L. acidophilus стала использоваться в форме ацидофильного молока для лечения заболеваний ЖКТ, сопровождающихся запорами. С 1950-х гг. накапливается опыт использования L. acidophilus и других культур для предупреждения антибиотико-ассоциированной диареи.

По мере развития микробиологии были получены новые сведения о позитивных свойствах бифидобактерий, кишечной палочки, нетоксигенного молочнокислого стрептококка – Streptococcus (или Enterococcus) faecium. Определенные штаммы этих микроорганизмов и их комбинации стали включать в состав препаратов пробиотиков.

При изучении способности микробов к адгезии к эпителиоцитам тонкой кишки показано, что применение микроорганизмов в сочетании повышает их способность фиксироваться в зоне щеточной каемки.

Механизмы лечебного действия пробиотиков включают: подавление роста патогенных микроорганизмов, восстановление целостности эпителия, стимуляцию секреции иммуноглобулина А, подавление выработки провоспалительных цитокинов, нормализацию метаболических процессов.

Современный подход к разработке подобных препаратов подразумевает, во-первых, применение микроорганизмов в сочетаниях и, во-вторых, выпуск их в капсулированной форме, допускающей длительное хранение при обычной температуре. Клиникоэкспериментальные исследования показали, что под действием желудочного сока и желчи пробиотики теряют до 90% своей активности до момента попадания в кишечник. Разрабатываются способы повышения выживаемости бактерий – за счет их иммобилизации на пористых микроносителях, включения в состав препарата компонентов питательной среды.

Несмотря на “теоретически” грамотную разработку пробиотических препаратов, далеко не все из них оказываются эффективными на практике. К настоящему времени накоплены данные множества открытых и слепых контролируемых исследований, по результатам которых сделаны некоторые выводы о перспективах применения тех или иных видов микроорганизмов при различных заболеваниях кишечника.

Показано, что наибольшим эффектом в лечении инфекционного гастроэнтерита у детей обладают L. rhamnosus штамма GG, у взрослых – E. faecium SF68.

По некоторым данным, в период восстановления после вирусного гастроэнтерита целесообразно назначение препаратов, содержащих лактобактерии или их комбинации с бифидобактериями и энтерококком; скорейшему разрешению после бактериальных кишечных инфекций способствуют подвиды бифидобактерий.

Способность к снижению частоты развития антибиотико-ассоциированной диареи установлена для следующих бактерий в составе пробиотиков:

L. rhamnosus штамма GG;
комбинация L. acidophilus и L. bulgaricus;
E. faecium SF68;
B. longum;
комбинация Lactobacillus и B. longum;
лечебные дрожжи Saccharomyces boulardii.

Для снижения частоты побочных эффектов антихеликобактерной терапии рекомендуется одновременный прием пробиотиков, содержащих L. rhamnosus и S. Boulardii, или комбинацию L. acidophilus с Bifidobacterium lactis.

В профилактике развития диареи путешественников эффективной оказалась комбинация L. acidophilus, L. Bulgaricus и Streptococcus thermophilus.

По данным мета-анализа, в лечении рецидивирующей инфекции C. Difficile (псевдомембранозного колита) наиболее эффективным является пробиотик, содержащий S. boulardii.

При синдроме раздраженного кишечника исследовалось влияние пробиотиков на выраженность таких симптомов, как вздутие живота, боль, а также общей суммы проявлений. Продемонстрирована эффективность микроорганизмов E. faecium, L. plantarum, а также смеси VSL#3 (комбинация Bifidobacterium breve, B. longum, B. infantis, L. acidophilus, L. plantarum, L. casei, L. bulgaricus, S. thermophilus), смеси L. acidophilus, L. plantarum и B. breve и смеси L. Salivarius и B. infantis. Однако эти данные получены на относительно небольших группах пациентов, поэтому пока не нашли отражения в международных рекомендациях по лечению больных синдромом раздраженного кишечника.

Остро стоит вопрос о возможности применения пробиотиков для лечения и профилактики обострений при хронических воспалительных заболеваниях кишечника – язвенном колите и болезни Крона. С учетом несомненной роли эндогенной микрофлоры в поддержании целостности эпителия и контроле воспаления, а также потенциальной токсичности применяющихся сегодня иммуносупрессоров на пробиотики возлагаются большие надежды как на “препараты будущего” в лечении воспалительных заболеваний кишечника. В силу недостаточно большого статистического материала результаты проведенных исследований пока не позволяют выработать общепризнанные рекомендации по включению пробиотиков в стандартные схемы лечения. Однако весьма обнадеживающие данные получены в отношении способности сложного пробиотика VSL#3 снижать частоту рецидивов болезни Крона. При язвенном колите эффект в плане поддержания ремиссии продемонстрировали E. coli Nissle 1917 и Lactobacillus GG; с точки зрения индукции ремиссии – очень высокие дозы пробиотика VSL#3.

Следует понимать, что назначение пробиотиков редко бывает эффективным в отсутствие этиотропного и патогенетического лечения основного заболевания. В зависимости от конкретной ситуации может потребоваться хирургическое лечение (например, при синдроме приводящей петли, межкишечных свищах), назначение противовоспалительных и антибактериальных препаратов, регуляторов моторики ЖКТ (например, при синдроме раздраженного кишечника).

В России зарегистрировано множество препаратов пробиотиков. Однако подавляющее большинство из них не является достаточно современным и не содержит видов и штаммов микроорганизмов, в отношении которых получены доказательные данные сравнительных исследований. По мере накопления опыта наметилась тенденция к применению комбинированных пробиотиков.

Характеристика и применение Линекса

В последние годы в практике российских гастроэнтерологов заслуженным признанием пользуется Линекс, комбинированный препарат, содержащий бактерии – представители естественной микрофлоры кишечника: Bifidobacterium infantis v. liberorum, Lactobacillus acidophilus и нетоксигенный молочнокиcлый стрептококк группы D – Streptococcus (Enterococcus) faecium. Как было отмечено выше, эти виды бактерий продемонстрировали клиническую эффективность в лечении ряда заболеваний кишечника и входят в число микроорганизмов, с которыми связываются особые “надежды” на включение в будущем в схемы терапии хронических воспалительных заболеваний кишечника. Культуры микроорганизмов, входящие в состав Линекса, получены выращиванием на средах с добавлением антибиотиков, поэтому обладают устойчивостью к большинству антибактериальных средств и способны размножаться даже в условиях антибактериальной терапии. Устойчивость полученных штаммов к антибиотикам настолько высока, что сохраняется при повторных инокуляциях 30 поколений, а также in vivo. При этом не отмечено переноса генов антибактериальной резистентности к другим видам микроорганизмов. Это очень важно с точки зрения последствий применения Линекса: как на фоне приема, так и после отмены препарата нет опасности выработки резистентности к антибиотикам со стороны патогенных бактерий и собственной микрофлоры.

Лечебное действие Линекса заключается во временном замещении функций собственной кишечной микрофлоры пациента в условиях ее подавления, в частности на фоне применения антибиотиков. Включение в состав Линекса лактобацилл, S. Faecium и бифидобактерий обеспечивает поступление “лечебной” микрофлоры в разные отделы кишечника в количественно и качественно сбалансированных соотношениях.

В плацебо-контролируемом исследовании с участием 60 взрослых пациентов, страдающих антибиотико-ассоциированной диареей или диареей неустановленной этиологии, прием Линекса уже в течение 3–5 дней сопровождался нормализацией стула. У детей продемонстрирована высокая эффективность Линекса в предотвращении и лечении уже развившейся антибиотико-ассоциированной диареи.

Применение Линекса на фоне эрадикационной антихеликобактерной терапии улучшает переносимость антибиотиков: снижает частоту развития метеоризма, диареи.

В кишечнике микробные компоненты Линекса оказывают не только эубиотическое действие, но и выполняют все функции нормальной кишечной микрофлоры: участвуют в синтезе витаминов В1, В2, В3, В6, В12, Н (биотина), РР, К, Е, фолиевой и аскорбиновой кислот. Снижая рН кишечного содержимого, они создают благоприятные условия для всасывания железа, кальция, витамина D.

Лактобактерии и молочнокиcлый стрептококк осуществляют ферментативное расщепление белков, жиров и сложных углеводов, в т. ч. оказывают заместительный эффект при лактазной недостаточности, которая в большинстве случаев сопутствует заболеваниям кишечника.

Линекс выпускается в капсулах, содержащих не менее 1,2×10 7 живых лиофилизированных бактерий.

Фармакокинетика препарата мало изучена в связи с тем, что в настоящее время отсутствуют фармакокинетические модели для исследования у человека сложных биологических веществ, состоящих из компонентов с различной молекулярной массой.

Грудным детям и детям до 2 лет Линекс назначают по 1 капсуле 3 раза в сутки, детям 2–12 лет – по 1–2 капсулы 3 раза в сутки, детям старше 12 лет и взрослым – по 2 капсулы 3 раза в сутки. Препарат принимают после еды, запивая небольшим количеством жидкости. Нельзя запивать горячими напитками во избежание гибели живой микрофлоры.

Линекс можно назначать в период беременности и грудного кормления. Сообщения о случаях передозировки Линекса отсутствуют.

Заключение

Таким образом, пробиотики, особенно их комбинированные препараты, постепенно занимают все более прочное место в гастроэнтерологии.

По мере накопления доказательной базы, они, возможно, предоставят врачам способ лечить больного, искусно влияя на его симбиоз с миром бактерий и минимальным риском для организма человека.

Литература

Бельмер С.В. Антибиотик-ассоциированный дисбактериоз кишечника // РМЖ. 2004. Т. 12. № 3. С. 148–151.
Жихарева Н.С., Хавкин А.И. Терапия антибиотик-ассоциированного дисбактериоза // РМЖ. 2006. Т. 14. № 19. С. 1384–1385.
Ушкалова Е.А. Роль пробиотиков в гастроэнтерологии // Фарматека. 2007. № 6. С. 16–23.
Шенвальд С., Цар В. Результаты одинарного плацебо-контролируемого клинического испытания Линекса. ИНДОК, Лек, 1984.
Arunachalam K, Gill HS, Chandra RK. Enhancement of natural immune function by dietary consumption of Bifidobacterium lactis (HN019). Eur J Clin Nutr 2000;54(3):263–67.
Bassetti S, Frei R, Zimmerli W. Fungemia with Saccharomyces cerevisiae after treatment with Saccharomyces boulardii. Am J Med 1998; 105:71–72.
Bengmark S. Colonic food: pre- and probiotics. Am J Gastroenterol 2000;95(Suppl. 1):S5–7.
Cremonini F, Di Caro S, Covino M, et al. Effect of different probiotic preparations on anti-Helicobacter pylori therapy-related side effects: a parallel group, triple blind, placebo-controlled study. Am J Gastroenterol 2002;97:2744–49.
Elmer GW, Surawicz CM, McFarland LV. Biotherapeutic agents. JAMA 1996;275:870–76.
Hilton E, Isenberg HD, Alperstein P, et al. Ingestion of yogurt containing Lactobacillus acidophilus as prophylaxis for candidal vaginitis. Ann Intern Med 1992;116:353–57.
Loizeau E. Can antibiotic-associated diarrhea be prevented? Ann Gastroenterol Hepatol 1993; 29:15–18.
Perapoch J, Planes AM, Querol A, et al. Fungemia with Saccharomyces cerevisiae in two newborns, only one of whom had been treated with Ultra-Levura. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2000;19:468–70.
Perdigon G, Alvarez S, Rachid M, et al. Immune system stimulation by probiotics. J Dairy Sci 1995;78:1597–606.
Scarpignato C, Rampal P. Prevention and treatment of traveler"s diarrhea: a clinical pharmacological approach. Chemotherapy 1995;41:48–81.

В проксимальной части пищевода можно обнаружить незначительное количество бактерий , обитающих в ротоглотке, в дистальных отделах - стафилококки, дифтероиды, молочнокислые бактерии, сарцины, Bacillus subtilis и кандиды. Бактериологическое исследование проводят для выявления возбудителей эзофагитов. Основные возбудители - ВПГ, ЦМВ и грибы рода Candida.

На герпетическую инфекцию указывают глубокие множественные небольшие язвы; при ЦМВ-инфекции они более крупные и склонны к слиянию. Кандидозные эзофагиты характерны для больных с выраженными иммунодефицитными состояниями. Для выделения кандид отбирают биоптаты при эзофагоскопии, микроскопируют мазки, окрашенных по Граму, и засевают материал на питательные среды.

Бактериологическое исследование желудка

В желудке бактерии практически отсутствуют, либо их количество не превышает 10 3 -10 4 мл содержимого, что обусловлено кислой рН. Большее количество бактерий выявляют в пило-рической части. При гипохлоргидрии в желудке выявляют лактобациллы, сарцины, энтеробак-терии, сииегнойную палочку, энтерококки, спорообразующие бациллы и различные грибы. Особое значение имеет Helicobacter pylori- возбудитель рецидивирующих язвенных гастродуоденитов.

Для обнаружения Н. pylori наиболее оптимальным считают забор биоптатов при фиброгастроскопии. При пищевых токсикоинфекциях , вызванных S. aureus и В. cereus, изучают промывные воды желудка, которые исследуют немедленно. Образцы центрифугируют, осадок микроскопируют и проводят посев на питательные среды. При невозможности немедленного анализа рН образцов доводят до нейтральных величин и замораживают. Рвотные массы доставляют в лабораторию на льду; при необходимости их можно заморозить.